說(shuō)到細(xì)胞,我想大家應(yīng)該都不陌生。我們最初了解細(xì)胞這個(gè)名詞應(yīng)該是在初中高中的生物課本上。我們也都知道,我們的生命體都是由細(xì)胞這個(gè)微小的單位組成(病毒除外)。
作為一個(gè)科研狗,拿到一管細(xì)胞后我們想到更多的是:這是什么細(xì)胞(動(dòng)物的?植物的?)?原代細(xì)胞?還是細(xì)胞系?或者說(shuō),這細(xì)胞是貼壁生長(zhǎng)的?還是懸浮生長(zhǎng)的?那么我們今天就來(lái)聊聊什么是原代細(xì)胞。
原代細(xì)胞(primary cell):是指從機(jī)體的組織(如人組織、小鼠組織、大鼠組織和兔組織等)經(jīng)蛋白酶或其它的方法獲得單個(gè)細(xì)胞并在體外進(jìn)行模擬機(jī)體培養(yǎng)的細(xì)胞,稱為原代細(xì)胞。一般認(rèn)為,培養(yǎng)的原代的第1代細(xì)胞和傳代到第10代以內(nèi)的細(xì)胞統(tǒng)稱為原代細(xì)胞培養(yǎng)。
在我們的科學(xué)研究過(guò)程中,每個(gè)涉及到細(xì)胞研究的研究者都會(huì)根據(jù)自己的實(shí)驗(yàn)需求采用不同的細(xì)胞。根據(jù)自己的課題采用原代細(xì)胞或者細(xì)胞系,我們都知道,細(xì)胞系的培養(yǎng)相對(duì)于原代細(xì)胞來(lái)說(shuō)更為的簡(jiǎn)單和易操作,也不會(huì)擔(dān)心細(xì)胞在正常條件下會(huì)發(fā)生分化、衰老等現(xiàn)象從而影響我們實(shí)驗(yàn)的可信性和重復(fù)性。而原代細(xì)胞從獲取到培養(yǎng)整個(gè)過(guò)程要考慮的問(wèn)題則非常多,接下來(lái)我們就具體聊聊吧。
原代細(xì)胞的獲取,就是從活體上將組織分解成單個(gè)細(xì)胞再進(jìn)行培養(yǎng)的過(guò)程,且整個(gè)過(guò)程要求無(wú)菌操作。具體要考慮的問(wèn)題有:組織分解的方式,培養(yǎng)的時(shí)間,換液時(shí)間,細(xì)胞狀態(tài)判斷和凍存。
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組織分解方式
將組織分解成單個(gè)細(xì)胞的方式目前主要有兩種:酶消化法和組織塊法(針對(duì)貼壁細(xì)胞)。
膠原酶的選擇:(根據(jù)自己的組織樣本選擇合適的膠原酶是實(shí)驗(yàn)成功的大前提。)
膠原酶的配制:建議看相關(guān)的文獻(xiàn)進(jìn)行膠原酶的配制。小編常用的是DMEM進(jìn)行配制,配制好的膠原酶消化液放置在37℃水浴鍋內(nèi)預(yù)熱(注意現(xiàn)用現(xiàn)配)。
胰酶(酶聯(lián)合法獲取原代細(xì)胞中會(huì)加入胰酶,相關(guān)文章也蠻多的)
膠原酶消化時(shí)間:根據(jù)組織特性,消化時(shí)間會(huì)有差異。以小鼠腎細(xì)胞為例,加入膠原酶Ⅰ進(jìn)行消化后,放入37℃培養(yǎng)箱中消化45min~1h左右,期間每隔10min中震蕩一次,知道組織塊幾乎完全消失為止(若是組織塊剪得非常細(xì)小,時(shí)間可以短一些,30min左右即可)。
培養(yǎng)過(guò)程:注意原代細(xì)胞在培養(yǎng)2天后可能會(huì)出現(xiàn)細(xì)胞液變黃(橘黃色)的現(xiàn)象,且無(wú)漂浮物,這是正常現(xiàn)象哦,不是污染。這是由于細(xì)胞在貼壁生長(zhǎng)過(guò)程中釋放了CO2和其他物質(zhì)導(dǎo)致培養(yǎng)液PH發(fā)生了改變,所以變黃。
取材:取組織中間部位,剪成大小均勻的小方塊(1~4mm2),清洗干凈后轉(zhuǎn)移至培養(yǎng)皿中,在培養(yǎng)皿中各組織塊要排列均勻。
加液:培養(yǎng)液不能浸沒(méi)組織塊,避免組織漂浮。然后培養(yǎng)4h左右加培養(yǎng)液,培養(yǎng)48h后換液。
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培養(yǎng)時(shí)間
無(wú)論是酶消化法還是組織塊法,取樣后培養(yǎng)時(shí)間最少需要一周以上的時(shí)間,期間可換液或者傳代。
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換液時(shí)間
無(wú)論酶消化法還是組織塊法,在培養(yǎng)期間需要隨時(shí)關(guān)注細(xì)胞的生長(zhǎng)狀況,需觀察其是否貼壁,是否污染,組織塊法要觀察是否有細(xì)胞遷移出來(lái)。正常情況下48~72h可換液一次。
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細(xì)胞狀態(tài)判斷
正常貼壁細(xì)胞在培養(yǎng)幾天后,會(huì)逐漸貼滿整個(gè)瓶底或者皿底,有的呈纖維狀,有的呈多邊形。下圖均為比較健康的原代細(xì)胞圖(左:小鼠成纖維細(xì)胞;右:雞胚成纖維細(xì)胞;下:人成纖維細(xì)胞)
這些細(xì)胞的狀態(tài)比較好,生長(zhǎng)至80%~90%融合就可以傳代啦,傳代一次后的細(xì)胞會(huì)更干凈漂亮。
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凍存
傳一代后的細(xì)胞(也可以不傳代直接凍存)培養(yǎng)至80%~90%便可凍存起來(lái)供后續(xù)實(shí)驗(yàn)用。
凍存液配制:不同的細(xì)胞可能會(huì)有不同的凍存液配制方案,各實(shí)驗(yàn)室也有自己的凍存方案,常見(jiàn)的方案有:
C: 5%DMSO+45%DMEM+50%FBS (小編常用小鼠的,鹿的都嘗試過(guò),細(xì)胞狀態(tài)OK)
原代細(xì)胞的培養(yǎng)其實(shí)與細(xì)胞系的培養(yǎng)無(wú)多大差別,針對(duì)不同的細(xì)胞會(huì)選擇不同的細(xì)胞培養(yǎng)液。
1.培養(yǎng)液選擇:(根據(jù)不同的細(xì)胞類型和實(shí)驗(yàn)要求進(jìn)行培養(yǎng)液的選擇)
最常用的L/H DMEM,F(xiàn)12 DMEM,RPMI 1640。
2.細(xì)胞培養(yǎng)過(guò)程無(wú)菌操作。正常的復(fù)蘇,換液和傳代操作,最后將培養(yǎng)好的細(xì)胞進(jìn)行相應(yīng)的實(shí)驗(yàn)即可
3.細(xì)胞鑒定。有時(shí)候我們獲取的原代細(xì)胞可能會(huì)有不是自己期望的細(xì)胞在里面,或者獲取的不是我們的目標(biāo)細(xì)胞。這個(gè)時(shí)候我們需要進(jìn)行細(xì)胞的鑒定。細(xì)胞鑒定需要購(gòu)買特定細(xì)胞的表面標(biāo)志物抗體或者染色試劑進(jìn)行鑒定。如:
上圖左:為鹿茸間充質(zhì)層細(xì)胞,它可以被甲苯胺藍(lán)染色藍(lán)色,胞質(zhì)胞核均被染成藍(lán)色。右:為鹿茸軟骨層細(xì)胞,被甲苯胺藍(lán)染色后胞質(zhì)胞核均染成紫紅色,因其內(nèi)部富含蛋白多糖,可被異染成紫紅色。
三、原代細(xì)胞試用的實(shí)驗(yàn)類型
前面我們了解了原代細(xì)胞獲取和培養(yǎng)過(guò)程中應(yīng)該注意的一些細(xì)節(jié),這有助于我們培養(yǎng)我們的原代細(xì)胞。那么原代細(xì)胞培養(yǎng)好后,它可適用哪些研究呢?
原代細(xì)胞不僅廣泛應(yīng)用于分子、細(xì)胞生物學(xué)和生物醫(yī)學(xué)基礎(chǔ)研究,如蛋白質(zhì)組學(xué)、基因組學(xué)、細(xì)胞株(系)研究、DNA,RNA和遺傳學(xué)研究等,還可應(yīng)用于當(dāng)今熱門(mén)的生物醫(yī)藥產(chǎn)業(yè)如藥物篩選、藥物代謝和毒理研究、癌癥藥物的研究等。在這些應(yīng)用中幾乎都涉及了幾個(gè)最常見(jiàn)的且最基礎(chǔ)的細(xì)胞實(shí)驗(yàn),如下:
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細(xì)胞增殖檢測(cè):
常見(jiàn)檢測(cè)方法:CCK8檢測(cè)法 ,MTT檢測(cè)法,Brdu檢測(cè)法,Edu檢測(cè)法,平板克隆形成
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細(xì)胞周期檢測(cè)
常見(jiàn)檢測(cè)方法:流式檢測(cè)細(xì)胞周期,標(biāo)記有絲分裂百分率法
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細(xì)胞凋亡檢測(cè)
常見(jiàn)檢測(cè)方法:流式檢測(cè)細(xì)胞凋亡,線粒體膜電位,活性氧檢測(cè),Hoechst染色,電鏡,TUNEL
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細(xì)胞轉(zhuǎn)移能力檢測(cè)
常見(jiàn)檢測(cè)方法:細(xì)胞劃痕實(shí)驗(yàn),Transwell實(shí)驗(yàn),Invasion實(shí)驗(yàn)