全部產(chǎn)品分類
操作篇：Western Blot 蛋白樣品制備
做 WB 之前，蛋白質(zhì)的提取至關(guān)重要，成也提取敗也提取?，F(xiàn)在開講;
一、單層貼壁細胞總蛋白的提取：
1. 倒掉培養(yǎng)液，并將瓶倒扣在吸水紙上使吸水紙吸干培養(yǎng)液（或?qū)⑵恐绷⒎胖靡粫菏箽堄嗯囵B(yǎng)液流到瓶底然后再用移液器將其吸走）。
2. 每瓶細胞加3 ml 4℃ 預(yù)冷的PBS（0.01M pH7.2～7.3）。平放輕輕搖動1 min 洗滌細胞，然后棄去洗液。重復(fù)以上操作兩次，共洗細胞三次以洗去培養(yǎng)液。將PBS 棄凈后把培養(yǎng)瓶置于冰上。
3. 按1 ml 裂解液加10 μl PMSF（100 mM），搖勻置于冰上。（PMSF 要搖勻至無結(jié)晶時才可與裂解液混合。）
4. 每瓶細胞加400 μl 含PMSF 的裂解液，于冰上裂解30 min，為使細胞充分裂解培養(yǎng)瓶要經(jīng)常來回搖動。
5. 裂解完后，用干凈的刮棒將細胞刮于培養(yǎng)瓶的一側(cè)（動作要快），然后用槍將細胞碎片和裂解液移至1.5 ml 離心管中。（整個操作盡量在冰上進行。）
6. 于4℃ 下 12000rpm離心5 min。（提前開離心機預(yù)冷）
7. 將離心后的上清分裝轉(zhuǎn)移倒0.5 min的離心管中放于-20℃ 保存。
（個人感覺上述方法可操作性有待加強，細胞中蛋白本來就很少，一瓶50 ml 的細胞有時按照實驗要求只能加100-200μl的裂解液，按照上述操作，直接用 200μl裂解液進行裂解，根本就不夠瓶壁上沾的。本人是先用預(yù)冷的PBS（一般數(shù)毫升）加入后，用細胞刮刮下細胞，轉(zhuǎn)移至試管中，如果數(shù)瓶細胞是收集同一蛋白的，可以放在同一試管，離心后再將蛋白轉(zhuǎn)移到EP 管中，這樣可操作性就比較強）
二、組織中總蛋白的提取：
1. 將少量組織塊置于1～2 ml 勻漿器中球狀部位，用干凈的剪刀將組織塊盡量剪碎。
2. 加400 μl單去污劑裂解液裂（含PMSF）于勻漿器中進行勻漿。然后置于冰上。
3. 幾分鐘后再碾一會兒再置于冰上，要重復(fù)碾幾次使組織盡量碾碎。
4. 裂解30 min 后，即可用移液器將裂解液移至1.5 ml 離心管中，然后在4℃ 下12000rpm 離心5 min，取上清分裝于0.5 ml 離心管中并置于-20℃ 保存。
三、加藥物處理的貼壁細胞總蛋白的提?。?/strong>
由于受藥物的影響，一些細胞脫落下來，所以除按（一）操作外還應(yīng)收集培養(yǎng)液中的細胞。以下是培養(yǎng)液中細胞總蛋白的提?。?/span>
1. 將培養(yǎng)液倒至15 ml 離心管中，于 2500rpm 離心5 min。
2. 棄上清，加入4 ml PBS 并用槍輕輕吹打洗滌，然后2500rpm 離心5 min。棄上清后用PBS重復(fù)洗滌一次。
3. 用槍洗干上清后，加100 μl裂解液（含PMSF）冰上裂解30 min，裂解過程中要經(jīng)常彈一彈以使細胞充分裂解。
4. 將裂解液與培養(yǎng)瓶中裂解液混在一起 4℃ 12000rpm 離心5 min，取上清分裝于0.5 ml 離心管中并置于-20℃ 保存。
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