操作篇:western blot 之蛋白含量測定
WB實驗在提取完蛋白質(zhì)后,就要對蛋白含量進行測定
測定方法如下:
一、制作標準曲線
1、從-20℃ 取出1 mg/ml BSA,室溫融化后,備用。
2、取18 個1.5 ml 離心管,3 個一組,分別標記為0 μg,2.5 μg,5.0 μg ,10.0 μg,20.0 μg ,40.0 μg。
3、在各管中加入各種試劑。
4、混勻后,室溫放置 2 min。在生物分光光度計上比色分析。
二、 檢測樣品蛋白含量
1、取足量的1.5 ml 離心管,每管加入4℃ 儲存的考馬斯亮藍溶液1 ml。室溫放置30 min 后即可用于測蛋白。
2、取一管考馬斯亮藍加0.15mol/L NaCl 溶液100 μl,混勻放置2分鐘可做為空白樣品,將空白倒入比色杯中在做好標準曲線的程序下按blank 測空白樣品。
3、棄空白樣品,用無水乙醇清洗比色杯2次(每次0.5 ml),再用無菌水洗一次。
4、取一管考馬斯亮藍加95 μl 0.15mol/L NaCl溶液和5μl待測蛋白樣品,混勻后靜置2 min,倒入扣干的比色杯中按sample鍵測樣品。
注意:每測一個樣品都要將比色杯用無水乙醇洗2次,無菌水洗一次。可同時混合好多個樣品再一起測,這樣對測定大量的蛋白樣品可節(jié)省很多時間。測得的結(jié)果是5 μl樣品含的蛋白量。